准备工作：
解剖器械需提前灭菌，烤干；Neuralbasal培养；D-PBS缓冲液；0.25%trypsin/0.02%EDTA消化液；0.05%poly-lysin。12孔板。
实验步骤：
1.海马组织分离：准备培养皿2个，分别加入冰冻D-Hank’s液约5ml，至于冰盘上；
2.取1-3天鼠，75％酒精浸泡片刻后，用大剪子断头处死。
3.取出完整脑至盛有预冷D-PBS的培养皿中，最后用弯头显微镊由海马游离端仔细分离海马组织，并剔除血管及脑膜。
4.将组织块用弯头眼科剪剪碎，每小块约2mm3左右，用枪移入5mlEP中，稍为沉淀1分钟，吸弃上清，加入0.25%trypsin/0.02%EDTA，37℃消化10-15分钟左右。
5.机械吹打分散细胞，40μm筛网过滤，制成单细胞悬液，1000rpm室温离心6min，弃去上清液，加Starting medium，尖嘴吸管吹打分散细胞后，制成4×105个/ml的单细胞悬液，接种在培养板内。
6.2小时后补培养基0.5ml每孔。
7.接种72h后，加入含10μM阿糖胞苷的Culture Medium作用48h，以抑制胶质细胞的过度增殖。之后每隔两天用Culture Medium换液。